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內(nèi)容大綱
什么是 ELISA?
作ELISA的四種方法
造成ELISA偽陽(yáng)性、高背景值、無訊號(hào)的原因
ELISA的作流程
ELISA和PCR的差異是?
酵素鏈接免疫吸附法 (Enzyme-Linked Immunosorbent Assay, ELISA),又稱酵素免疫分析 (enzyme immunoassay, EIA)、酶聯(lián)法,是一種靈敏、特異且廣泛應(yīng)用于生物學(xué)、生化學(xué)和醫(yī)學(xué)研究中的分子生物學(xué)分析技術(shù)。 其原理為在固體表面 (如微孔盤) 上,利用抗原及抗體間的專一性鍵結(jié),以酵素標(biāo)記的抗體或抗原,以檢測(cè)樣品中的目標(biāo)分子。 而用以標(biāo)記的酵素被稱為報(bào)道酵素,常見的有辣根過氧化物酶(horseradish peroxidase, HRP)、堿性磷酸酶(alkaline phosphatase, AP)等。
ELISA 相較于其它的免疫分析技術(shù)具有更多優(yōu)勢(shì)。 首先,相較于其他免疫學(xué)檢測(cè)技術(shù),ELISA具有更高的靈敏度和專一性,可以檢測(cè)非常低濃度的生物分子,如蛋白質(zhì)、抗體和細(xì)胞因子等,并可區(qū)分相似的分子。 這使得ELISA在診斷疾病、監(jiān)測(cè)病情、檢測(cè)病原體等方面更加具有可信度和*度。
作上,ELISA作簡(jiǎn)單、快速、容易自動(dòng)化,可減少人工作的誤差,提高實(shí)驗(yàn)的穩(wěn)定性和可重復(fù)性。 而且,ELISA所需的樣品量很小,能夠節(jié)省寶貴的樣品。 ELISA 亦常應(yīng)用于高通量 (high throughput) 檢測(cè),同時(shí)檢測(cè)多種樣品,有效提高檢測(cè)效率、節(jié)省時(shí)間和成本。 同時(shí),由于 ELISA 是一種非放射性的檢測(cè)方法,不存在輻射危害,符合環(huán)保和人體健康的要求。 基于以上優(yōu)勢(shì),ELISA 被廣泛應(yīng)用于臨床診斷、生命科學(xué)研究等領(lǐng)域。
ELISA 依分析目的不同,可分為定性、定量及半定量生物分子
依不同作方法,ELISA 又可分為直接法 (Direct ELISA)、間接法 (Indirect ELISA)、三明治法 (Sandwich ELISA)、競(jìng)爭(zhēng)法 (Competitive ELISA) 四種方法。
直接法通常用于檢測(cè)抗原,在過程中只需要使用到一種一級(jí)抗體 (primary antibody),不需要復(fù)雜的步驟即可偵測(cè)分析物 (analyte),為*簡(jiǎn)單的 ELISA 方法。 其作方法是將目標(biāo)抗原固定(coating; immobilizing) 于固體表面 (solid phase) 上,一般使用 96 孔微孔盤 (96-well plate),再使用酵素標(biāo)記之一級(jí)抗體檢測(cè)待測(cè)抗原。 由于反應(yīng)過程單純,直接法可以快速分析結(jié)果,且不會(huì)產(chǎn)生二級(jí)抗體(secondary antibody)的非專一性交互反應(yīng)。 然而,也因?yàn)橹皇褂玫揭环N抗體,直接法無法放大檢測(cè)信號(hào)(signal amplification)、降低其偵測(cè)的靈敏度。 此外,試驗(yàn)中的一級(jí)抗體都必須用酵素標(biāo)記,相當(dāng)耗時(shí)、耗成本。
間接法是一種使用一級(jí)抗體與酵素標(biāo)記的二級(jí)抗體進(jìn)行結(jié)合的檢測(cè)方法,通常用于檢測(cè)未知的一級(jí)抗體。 其中,*常見的應(yīng)用實(shí)例是用于檢測(cè)艾滋病毒 (human immunodeficiency virus, HIV)。
這個(gè)方法的步驟是先將已知抗原固定在固體表面上,加入檢體,再加入酵素標(biāo)記的二級(jí)抗體(secondary antibody),以偵測(cè)待測(cè)抗體。 由于使用了兩種抗體,因此間接法具有較高的靈敏度,且可使用多種一級(jí)抗體,在應(yīng)用上更具彈性。
然而,間接法中二級(jí)抗體間可能會(huì)發(fā)生交互作用,導(dǎo)致非專一性的信號(hào)產(chǎn)生,影響實(shí)驗(yàn)結(jié)果的準(zhǔn)確性。 為了解決這個(gè)問題,可以在實(shí)驗(yàn)過程中加入阻斷液(blocking solution),減少非專一性的交互作用。 如此一來,間接法就能夠更準(zhǔn)確地檢測(cè)待測(cè)抗體,并得到可靠的結(jié)果。
三明治法是利用兩種抗體對(duì)檢體中的待測(cè)抗原進(jìn)行兩次專一性辨認(rèn),因此具有高偵測(cè)靈敏度及高專一性。 家用驗(yàn)孕試紙即是三明治法的應(yīng)用實(shí)例之一。 不過,此方法中的待測(cè)抗原須為多價(jià)抗原,以便與兩種或以上的專一性抗體結(jié)合。 與直接法和間接法不同的是,三明治法是將捕捉抗體(capture antibody)固定在固體表面上,再加入檢體,捕捉抗體會(huì)抓住檢體中具有專一性的抗原,再與一級(jí)抗體及酵素標(biāo)記二級(jí)抗體反應(yīng)。 由于這個(gè)高度辨識(shí)的過程,檢體不需要事先進(jìn)行純化,而可直接進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。 然而,需要注意的是,在使用此方法時(shí)必須選用特定的一級(jí)抗體及二級(jí)抗體。 為了避免一級(jí)抗體跟二級(jí)抗體競(jìng)爭(zhēng)與抗原結(jié)合的現(xiàn)象發(fā)生,必須確認(rèn)一級(jí)抗體跟二級(jí)抗體具有不同的抗原表位(epitopes,即抗原上可與抗體結(jié)合的位置),且必須驗(yàn)證一級(jí)抗體跟二級(jí)抗體可進(jìn)行專一性結(jié)合,并可同時(shí)作用。
競(jìng)爭(zhēng)法,又稱為競(jìng)爭(zhēng)抑制ELISA (inhibition ELISA),是利用待測(cè)抗原與酵素標(biāo)記的生物分子,競(jìng)爭(zhēng)結(jié)合于固定在固體表面上的抗原或抗體。 若待測(cè)抗原在檢體中濃度越高,就會(huì)與越多抗體結(jié)合,導(dǎo)致有酵素標(biāo)記之抗體結(jié)合少,呈色反應(yīng)訊號(hào)值亦越低,即待測(cè)抗原濃度與呈色反應(yīng)成反比。 一般多用于檢測(cè)半抗原(hapten)或小分子抗原。
直接法 | 間接法 | 三明治法 | 競(jìng)爭(zhēng)法 | |
方法原理 | 將目標(biāo)抗原固定 于固體表面上,利用酵素標(biāo)記之一級(jí)抗體檢測(cè)待測(cè)抗原 | 將已知抗原固定于固體表面上,加入一級(jí)抗體、再加入酵素標(biāo)記的二級(jí)抗體偵測(cè)待測(cè)抗體 | 兩種抗體對(duì)檢體中的抗原進(jìn)行兩次專一性辨認(rèn) | 利用待測(cè)抗原與酵素標(biāo)記的生物分子,競(jìng)爭(zhēng)結(jié)合于固定在固體表面上的抗原或抗體 |
優(yōu)點(diǎn) | ?分析快速 ?不會(huì)有二級(jí)抗體的交互作用產(chǎn)生 | ?高靈敏度 ?可使用多種一級(jí)抗體,彈性高 ?成本低 | ?樣品不需純化 ?高靈敏度 ?高專一性 | ?樣品不需純化 ?可檢測(cè)單一樣品中大部份的抗原 ?變異性低 |
缺點(diǎn) | ?靈敏度低 ?可能出現(xiàn)偽陽(yáng) 或干擾 ?須使用具專一性的一級(jí)抗體 ?須以酵素標(biāo)記一級(jí)抗體,費(fèi)時(shí)、高成本 | ?二級(jí)抗體的交互作用 | ?須使用特定的一級(jí)及二級(jí)抗體 ?待測(cè)抗原必須是多價(jià)抗原 ?分析耗時(shí)、成本高 | ?低專一性,不適用于稀釋樣品 |
適用目標(biāo)物 | 抗原 | 抗體 | 大分子抗原 | 半抗原、小分子抗原 |
ELISA常面臨結(jié)果不穩(wěn)定的狀況,如偽陽(yáng)性 (false positive)、高背景值 (high background)、無訊號(hào)或訊號(hào)太低 (no or low signal) 等。 而造成偽陽(yáng)性或高背景值的原因,部份是由于未結(jié)合的抗體、抗原或是雜質(zhì)在各步驟間沒有被完全去除,從而導(dǎo)致背景信號(hào)或是非專一性的交互作用。
洛科BioWasher 100微孔盤清洗機(jī),特殊管路高度斷差設(shè)計(jì),避免微孔間的交叉污染
BioWasher 100 微孔盤清洗機(jī)
BioWasher 100-T E
BioWasher 100-T微孔盤清洗機(jī)
為了降低偽陽(yáng)性及高背景值的可能性,ELISA各步驟間必須進(jìn)行清洗(wash),借由此步驟去除非專一性或親和力低的反應(yīng)物干擾。 清洗液通常為磷酸鹽PBS緩沖溶液或TBS緩沖液,并可添加適當(dāng)濃度的界面活性劑,如0.01%~0.1% Tween-20或Triton X-100 以降低樣品中的非專一性結(jié)合 。
清洗的過程非常重要。 一般而言,每個(gè)清洗步驟需以緩沖液清洗 2~5 次。 若使用人工手動(dòng)清洗,則需注意甩凈殘留反應(yīng)液,并且于甩凈殘液后,盡快加入下一個(gè)步驟的反應(yīng)液,以避免微孔盤過度干燥,亦可運(yùn)用工具例如微孔盤清洗機(jī)進(jìn)行清洗,以加快清洗速度、避免交叉污染。
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人工手動(dòng)清洗 |
微孔盤清洗機(jī) |
抽吸清洗液 |
微量吸管 (pipette)、甩干 |
分注器 |
分注清洗液 |
微量吸管、洗瓶 (wash bottle) |
分注器 |
微孔盤放置 |
平放 |
平放、橫放 |
減少液體殘留 |
手扶斜放,可減少殘留 |
使用可斜放的清洗機(jī),可減少殘留 |
高溫高壓滅菌 (Autoclavable) |
依分注產(chǎn)品不同 |
通??梢?/p> |
成本 |
低 |
需考量整套系統(tǒng)(包含真空泵等)所包含之成本 |
ELISA 及 PCR 都是分子生物學(xué)中常使用的分析技術(shù),總的來說,兩者皆有其優(yōu)缺點(diǎn),因此需要依據(jù)具體的應(yīng)用選擇要使用哪種技術(shù)。 以2019年造成全球疫情大流行的新冠肺炎(COVID-19)為例,ELISA及PCR都可以用來檢測(cè)冠狀病毒(coronavirus),但應(yīng)用上仍有些許差異。
ELISA | PCR | |
原理 | 利用抗原、抗體間的專一性結(jié)合,并利用酵素催化產(chǎn)生呈色反應(yīng) | 放大 DNA 片段來檢測(cè)病原體或檢測(cè)目標(biāo)基因 |
檢測(cè)目標(biāo)物 | 蛋白質(zhì)分子 | DNA |
靈敏度 | 較高 | 較低 |
專一性 | 較低 | 較高 |
時(shí)間 | 慢 | 快 |
成本 | 較便宜 | 較昂貴 |
用于檢測(cè)冠狀病毒(cornavirus)之應(yīng)用差異比較 | ||
樣本 | 血清 | 唾液 |
分析目標(biāo)物 | 抗體 | RNA 逆轉(zhuǎn)錄后的DNA |
應(yīng)用 | 確認(rèn)人體是否被病毒感染過 | 檢測(cè)病毒是否存在于人體體內(nèi) |
因此,在流行病學(xué)中,利用 ELISA 搭配 PCR 檢測(cè)病毒或其它生物子,如猴痘病毒 (Monkeypox virus, MPV)、漢他病毒 (Hantavirus)、諾羅病毒 (Norovirus) 等,可以達(dá)到更全面的檢測(cè)效果。
另一種技術(shù),則是將 ELISA 與 PCR 結(jié)合,為 PCR-ELISA。 此方法可以將固定于固體表面的DNA,直接以PCR定量DNA產(chǎn)物。 由于本篇主要探討 ELISA 之分析方法,本文將不針對(duì) PCR-ELISA 進(jìn)行討論。