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應(yīng)用支持

無(wú)菌作基本技術(shù)

  1. 實(shí)驗(yàn)進(jìn)行前,無(wú)菌室及無(wú)菌作臺(tái)(laminar flow)以紫外燈照射30-60分鐘滅菌,以70% ethanol擦拭無(wú)菌作抬面,并開(kāi)啟無(wú)菌作臺(tái)風(fēng)扇運(yùn)轉(zhuǎn)10分鐘后,才開(kāi)始實(shí)驗(yàn)作。
  2. 每次作只處理一株細(xì)胞株,且即使培養(yǎng)基相同亦不共享培養(yǎng)基,以避免失誤混淆或細(xì)胞間污染。
  3. 無(wú)菌作工作區(qū)域應(yīng)保持清潔及寬敞,必要物品,例如試管架、吸管吸取器或吸管盒等可以暫時(shí)放置,其他實(shí)驗(yàn)用品用完即應(yīng)移出,以利于氣流之流通。 實(shí)驗(yàn)用品以70% ethanol擦拭后才帶入無(wú)菌作臺(tái)內(nèi)。 實(shí)驗(yàn)作應(yīng)在抬面之中央無(wú)菌區(qū)域,勿在邊緣之非無(wú)菌區(qū)域作。
  4. 小心取用無(wú)菌之實(shí)驗(yàn)物品,避免造成污染。 勿碰觸吸管尖頭部或是容器瓶口,亦不要在打開(kāi)之容器正上方作實(shí)驗(yàn)。
  5. 實(shí)驗(yàn)完畢后,將實(shí)驗(yàn)物品帶出工作臺(tái),以70% ethanol擦拭無(wú)菌作臺(tái)面。 作間隔應(yīng)讓無(wú)菌作臺(tái)運(yùn)轉(zhuǎn)5-10分鐘后,再進(jìn)行下一個(gè)細(xì)胞株之作。
  6. 工作人員應(yīng)注意自身之安全,須穿戴實(shí)驗(yàn)衣及手套后才進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。 對(duì)于來(lái)自人類或是病毒感染之細(xì)胞株應(yīng)特別小心作,并選擇適當(dāng)?shù)燃?jí)之無(wú)菌作臺(tái)(至少Class II)。 作過(guò)程中,應(yīng)避免引起aerosol之產(chǎn)生,小心毒性藥品,例如DMSO及TPA等,并避免尖銳針頭之傷害等。
  7. CO2培養(yǎng)箱 :
    1. 細(xì)胞培養(yǎng)是否需二氧化碳供應(yīng),依細(xì)胞培養(yǎng)基種類而異。
    2. 若細(xì)胞培養(yǎng)基以碳酸鹽為pH緩沖系統(tǒng),則需補(bǔ)充二氧化碳以達(dá)到緩沖作用,應(yīng)培養(yǎng)細(xì)胞于二氧化碳環(huán)境下,例如使用二氧化碳培養(yǎng)箱(常用之比例為5% CO2,95% air),或是 灌入適量二氧化碳至培養(yǎng)容器內(nèi),放入一般培養(yǎng)箱中培養(yǎng)即可。 為使二氧化碳能夠流通,培養(yǎng)瓶(例如T-flask)放入二氧化碳培養(yǎng)箱時(shí)應(yīng)松開(kāi)瓶蓋,或使用透氣瓶蓋。 取出觀察時(shí),則關(guān)緊瓶蓋,以避免污染。
    3. 若細(xì)胞培養(yǎng)基含有其他緩沖物質(zhì)而不需二氧化碳供應(yīng),則放在一般培養(yǎng)箱中培養(yǎng)即可。
    4. 培養(yǎng)箱內(nèi)可放置水盤以維持適量之溼度,避免因培養(yǎng)基蒸發(fā)造成鹽類濃度之變化而影響細(xì)胞生長(zhǎng)。
  8. 定期檢測(cè)下列項(xiàng)目:
    1. 無(wú)菌作臺(tái):注意airflow壓力,定期更換紫外線燈管、HEPA過(guò)濾膜及prefilter預(yù)濾網(wǎng)(300小時(shí)/預(yù)濾網(wǎng),3000小時(shí)/HEPA)。
    2. CO2培養(yǎng)箱:CO2濃度、溫度、及水盤是否有污染。
    3. CO2鋼瓶:CO2壓力
    4. 恒溫水槽:定期換水

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